细胞复苏是指将冻存在液氮里边或者-80℃冰箱中的细胞解冻,再培养传代。细胞复苏应采用快速融化的方法,这样的目的是为了让细胞外结晶在很短的时间内融化,从而避免慢悠悠的融化,使得水分渗入细胞内再结晶,从而对细胞再次造成伤害,从而影响细胞的存活率。
细胞复苏过程:
1:细胞是冻在-80℃的环境里面的,所以拿出来后,应该尽快去37℃水浴锅里解冻(我一般是放在PE手套里面,然后在37摄氏度的水域上快速融化。)这一步的操作不要超过一分钟!
2:用预热的培养基稀释冻存的细胞(这步我会把融化的冻存液加入到15ml的管子里,加入3ml的预热的培养液,在超净台里完成)
3:离心200g 5-10min,具体的离心的时间不同的细胞略有不同得具体得看培养的protocol
4:在离心以后,倒掉上清(因为冻存液里用DMSO, 它的作用是在冻存细胞时加入,加入的量大概是总体积的10%,起到防冻剂的作用,防止冷冻过程中细胞内形成冰晶。)
5:用预热的培养液重悬细胞(根据培养的细胞皿的体积调整,我参照了GM12878,K562的培养protocol,刚开始的细胞密度不要超过10^6 /ML,但是细胞的密度也别太稀了,要不然长的会不好)
6:放到37℃,5%的二氧化碳培养箱中培养细胞。
PS:在看细胞冻存和复苏的时候,有一个词叫做“慢冻快融”,所以在解冻细胞的时候,在加入预热的培养基洗细胞之前,操作尽量的快,减少DMSO对细胞的伤害。我的冻存液的配方是:90%的FBS+10%的DMSO,冻存效果没问题!
问题解决方案:
1.取错细胞:
拿错冻存管。(快快快,匆忙之中,难免出错,况且-170多度,冻手!)
解决:
(1)核查记录册及冻存管上细胞的名称、时间是否一致。
(2)拿细胞时戴手套!
2.水浴时间太长:
2min还没融化。(冻存管的壁较厚,隔热)
解决:
(1)适当提高水浴温度(37度-40度)。
(2)要是冬天,就选用保温盒。
3.冰盒内时间太长:
复苏1h后,还没有加入新的培养液。(高浓度DMSO防止胞内形成冰晶,冻存时保护细胞,但复苏融解后,浸泡时间太久会,对细胞有毒性)
解决: 提前预定超净台,减少复苏后插在冰盒里等待的时间。
4.失去耐心:
复苏三四天后,细胞没有任何动静,认为失败,倒掉所有细胞。(有些细胞复苏后一星期,才有起色)
解决: 不要换液,耐心等待,两周后再做决定。