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在临床检验或科研实验中，获取高质量的血清样本至关重要。溶血是指红细胞破裂，导致血红蛋白释放到血清中，这不仅会影响检测结果（如酶活性、电解质等指标），还可能导致样本报废。因此，在血清分离过程中必须采取有效措施防止溶血发生。
分离方法与防溶血要点
目前常用的血清分离方法主要有自然凝固法和离心法。为避免溶血，应优先采用标准化流程，并注意以下关键点：
1、采血管选择：使用不含肝素的采血管，因肝素可能抑制血小板功能，增加出血风险。
2、促凝处理：若使用促凝剂或分离胶采血管，可加速血液凝固，缩短等待时间，提高血清质量。
3、混匀方式：采血后立即轻轻倒转试管4–5次，使促凝剂均匀分布，切勿剧烈摇晃。
4、凝固条件：将采血管置于室温（20–30°C）下静置30分钟至2小时，待血液完全凝固。避免4°C过夜冷藏，否则易引发溶血。
5、离心参数：
一般样本：3000–4000 rpm（约1000–2000 ×g），离心5–10分钟。
小鼠等动物样本：因其红细胞更脆弱，建议降低转速至1000–1500 rpm，离心10–15分钟。

操作环节	✅ 正确做法	❌ 错误做法	风险说明
采血部位消毒	酒精消毒后彻底擦干再穿刺	未干即采血	酒精残留破坏红细胞膜导致溶血
抽血速度	缓慢、平稳抽取	快速用力抽拉针筒	负压过大造成机械性溶血
血液放置	室温静置30–60分钟	放入4°C冰箱过夜	低温诱导溶血
离心处理	3000–4000 rpm，5–10 min	4000 rpm持续30 min以上	产热过多损伤细胞
动物采血（如小鼠）	让血液自由滴落，不蹭管壁	贴着管口摩擦或挤压	物理损伤致溶血

避免溶血的核心是“轻柔操作 + 正确设备 + 合理参数”。
优先选用促凝管或分离胶管，采血后室温静置、及时离心，严禁低温过夜或暴力操作。对于动物实验，尤其要注意红细胞脆性差异，调整离心条件。只要严格执行标准化流程，即可获得高质量无溶血的血清样本。

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