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30 人阅读发布时间:2026-01-09 09:19
细胞传代是体外培养中的常规操作,旨在将细胞从旧培养环境转移至新环境,以维持其持续增殖能力并扩增数量。然而,不当操作易导致细胞应激、污染或表型改变,影响实验重复性。因此,遵循最佳实践对保证实验质量至关重要。
一、判断传代时机的核心指标
贴壁细胞:当细胞融合度达到70%–90%时为最佳传代时机,避免完全汇合导致接触抑制。
悬浮细胞:通过细胞密度和生长曲线判断,通常在对数期末期、活率>90%时传代。
观察要点:
l 培养基颜色变化(如酚红变黄提示酸化);
l 细胞形态是否正常(避免出现变大、颗粒增多等老化迹象);
l 是否出现聚集或漂浮死细胞。
二、不同类型细胞的传代处理方式
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维度 |
贴壁细胞 |
悬浮细胞 |
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传代方法 |
需胰蛋白酶/EDTA消化脱落 |
直接离心重悬分瓶 |
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传代比例 |
通常1:2至1:4,依细胞系而定 |
多为1:2或按密度接种 |
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关键注意点 |
控制消化时间,避免损伤细胞 |
注意防止过度震荡破坏细胞膜 |
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代表性细胞系 |
HEK293、HeLa、RAW264.7 |
淋巴细胞、THP-1 |
(补充说明)对于特殊细胞如诱导多能干细胞(iPS),需更精细控制传代周期以维持未分化状态。
三、提升可重复性的操作建议
1、建立传代记录表:记录每次传代时间、比例、细胞状态、活率等,便于追踪代次与性能变化。
2、定期检测细胞活性:使用台盼蓝染色法评估,确保传代前活率≥90%。
3、控制传代次数:
原代细胞一般限于10–20代;
永生化细胞系虽可长期传代,但仍建议使用低代次细胞开展关键实验。
4、标准化操作流程:
所有试剂预热至37℃;
操作在超净台内完成,严格无菌。
建议
为确保细胞健康与实验一致性,应结合形态观察 + 生长曲线 + 活性检测综合判断传代时机,并坚持标准化记录与操作。对于敏感细胞系(如原代或iPS),建议采用虚拟仿真软件辅助培训,提升操作熟练度 。